Тваринництво та технології харчових продуктів

Підвищення резистентності та поліпшення адаптаційно-компенсаторних механізмів організму молоді риб за умов мультитрофічної аквакультури

Олена Гончарова, Віталій Бех
Завантажити статтю
Анотація

Актуальність дослідження зумовлена тенденцією розвитку напряму органічної аквакультури з отриманням екологічно-безпечної продукції. Метою дослідження було визначення та порівняння ефективності впровадження кормового чинника різного походження при підгодівлі та підрощенні райдужної форелі на ранніх стадіях онтогенезу. Дослідження ґрунтувалось на теоретичних (аналіз, синтез, порівняння та моделювання) експериментальних, лабораторних методах, загальноприйнятих у рибогосподарських та фізико-хімічних дослідженнях. Результати демонструють підвищення резистентності та загальної життєздатності організму молоді форелі, поліпшення морфо-функціональних параметрів крові, активацію метаболічних процесів в експериментальній групі 1та 2. Втім, вищі параметри були отримані в експериментальній групі 2 по відношенню до інших груп дослідження. Середня маса тіла риби перевищувала параметри в експериментальній групі 1 (на 11,7  %, p < 0,01) та експериментальній групі 2 (на 19,5  %, p < 0,001) контрольну групу. Загальна кількість еритроцитів в експериментальній групі 1 перевищувала значення в контрольній групі на10,6  % (p < 0,01) та в експериментальній групі 2 на 15,3  % (p < 0,001). В експериментальній групі  1 вміст загального білку перевищував значення на 14,8  %, в експериментальній групі 2 – на 22,2 % (p < 0,01) по відношенню до контрольної групи. Вміст креатиніну в крові риб в експериментальній групі 1 перевищував значення (на 9,7 %) та в експериментальній групі 2 (на 17,6 %, p < 0,05) контрольну групу. Біохімічний склад м’язової частини форелі був вищим та кращим за поживними характеристиками в експериментальній групі  1 та 2 по відношенню до контрольної групи. Запропонований метод підгодівлі за двома способами (експериментальної групи  1 та 2) сприяє активації швидкості росту риб в двох експериментальних групах. Практична цінність дослідження полягає у сприянні поліпшенню якісних та кількісних параметрів, зокрема, біохімічного складу м’язової частини в експериментальних групах  1 та 2 в порівнянні з контрольними значеннями на фоні збільшення темпів зростання

Ключові слова

Oncorhynchus mykiss; фізіолого-біохімічні процеси; альтернативні природні кормові ресурси; оптимізація технології підгодівлі

ЦИТУВАТИ
Honcharova, O., & Bekh, V. (2024). Increase of resistance and improvement of adaptation and compensatory mechanisms of the body of juvenile fish under conditions of multitrophic aquaculture. Animal Science and Food Technology, 15(3), 9-29. https://doi.org/10.31548/animal.3.2024.09
Використані джерела
  1. Amenyogbe, E., Chen, G., Wang, Z., Huang, J., Huang, B., & Li, H. (2020). The exploitation of probiotics, prebiotics and synbiotics in aquaculture: Present study, limitations and future directions: A review. Aquaculture International, 28(3), 1017-1041. doi: 10.1007/s10499-020-00509-0.
  2. Barkar, V.P., & Tribuntsova, O.B. (2022). Use of waste from entomological production for breeding black Lionfly. Bulletin of Agricultural Science, 12(837), 48-53. doi: 10.31073/agrovisnyk202212-07.
  3. Bekh, V.V., Martseniuk, V.P., & Tushnytska, N.I. (2020). Prospects for the use of protein components of non-traditional origin in compound feed for aquaculture (Review). Fisheries Science of Ukraine, 2(52), 3-64. doi: 10.15407/fsu2020.02.053.
  4. Belluco, S., Losasso, C., Maggioletti, M., Alonzi, C.C., Paoletti, M.G., & Ricci, A. (2013). Edible insects in a food safety and nutritional perspective: A critical review. Comprehensive Reviews in Food Science and Food Safety, 12(3), 296-313. doi: 10.1111/1541-4337.12014.
  5. Bolton, C.M., Muller, N., Hyland, J., Johnson, M.P., Souza Valente, C., Davies, S.J., & Wan, A.H.L. (2021). Black soldier fly larval meal with exogenous protease in diets for rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) production meeting consumer quality. Journal of Agriculture and Food Research, 6, article number 100232. doi: 10.1016/J.JAFR.2021.100232.
  6. Bruni, L., Pastorelli, R., Viti, C., Gasco, L., & Parisi, G. (2018). Characterisation of the intestinal microbial communities of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) fed with Hermetia illucens (black soldier fly) partially defatted larva meal as partial dietary protein source. Aquaculture, 487, 56-63. doi: 10.1016/j.aquaculture.2018.01.006.
  7. Commission Implementing Decision (EU) No. 2017/1442 Establishing Best Available Techniques (BAT) Conclusions, under Directive 2010/75/EU of the European Parliament and of the Council. (2017, July). Retrieved from https://eur-lex.europa.eu/eli/dec_impl/2017/1442/oj.
  8. Deren, O.V., & Fedorenko, M.O. (2023). Substantiation and prospects of using insects as a source of protein in fish feeds (a review). Fisheries Science of Ukraine, 4(66), 114-140. doi: 10.61976/fsu2023.04.114.
  9. Dobryanska, O., Simon, M., & Kolesnyk, R. (2022). Prebiotics based on mannan-oligosaccharides in fish feeding (a review). Fisheries Science of Ukraine, 2(60), 54-69. doi: 10.15407/fsu2022.02.054.
  10. D'Souza, N., Skonberg, D.I., Stone, D.A.J., & Brown, P.B. (2006). Effect of soybean meal-based diets on the product quality of rainbow trout fillets. Journal of Food Science, 71(4), 337-342. doi: 10.1111/j.1750-3841.2006.00018.x.
  11. Bokii, O., & Kovalenko, O. (2024). State regulation instruments for the development of the agro-industrial complex under martial law in Ukraine. Ekonomika APK, 31(2), 10-22. doi: 10.32317/2221-1055.202402010.
  12. Espe, M., Lemme, A., Petri, A., & El-Mowafi, A. (2007). Assessment of lysine requirement for maximal protein accretion in Atlantic salmon using plant protein diets. Aquaculture, 263(1-4), 168-178. doi: 10.1016/j.aquaculture.2006.10.018.
  13. European Convention for the Protection of Vertebrate Animals Used for Experimental and Other Scientific Purposes. (1986). Retrieved from https://eur-lex.europa.eu/legal-content/EN/TXT/?uri=CELEX%3A21999A0824%2801%29.
  14. FAO. (2024). The state of world fisheries and aquaculture 2024 blue transformation in action, UN: The United Nations. United States of America. Retrieved from https://policycommons.net/artifacts/12522071/the-state-of-world-fisheries-and-aquaculture-2024-blue-transformation-in-action/13421812/. 
  15. Finke, M.D. (2007). Estimate of chitin in raw whole insects. Zoo Biology, 26(2), 105-115. doi: 10.1002/zoo.20123. 
  16. Gutierrez, R.C., Rutaquio, M.P., Aya, F., & Romana-Eguia, M.R.R. (2023). Culture of natural food for farmed freshwater fish and prawn larvae. Philippines: Southeast Asian Fisheries Development Center.
  17. Henry, M., Gasco, L., Piccolo, G., & Fountoulaki, E. (2015). Review on the use of insects in the diet of farmed fish: Past and future Animal Feed Science and Technology, 203, 1-22. doi: 10.1016/j.anifeedsci.2015.03.001.
  18. Honcharova, O., & Bekh, V. (2023). Adaptive solutions in aquaculture under the influence оf transformation of abiotic and biotic factors. In Innovative technology (pp. 58-64). Karlsruhe: Scientific World-NetAkhatAV. doi: 10.30890/2709-2313.2023-16-03-006.
  19. Muhammedov, M., Nizamov, A., Mustafoev, G., Babakulov, B., & Yuldashev, Sh. (2023). The role of agriculture in shaping the prospects of socio-economic development of Uzbekistan. Scientific Horizons, 26(11), 155-165. doi: 10.48077/scihor11.2023.155.
  20. Hrynevych, N.E., Semaniuk, N.V., Svitelskiy, M.M., Trophymchuk, A.M., Khomyak, O.A., & Prysiazhniuk, N.M. (2019). Analysis of the hydrotechnological component of industrial aqua farms with a closed water supply. Water Bioresources and Aquaculture, 59-76. doi: 10.32851/wba.2019.2.5. 
  21. Improving existing competencies and development of new businesses in the field of trade in aquaculture and fish products-DACIAT BSB-461. (2020). Retrieved from https://blacksea-cbc.net/wp-content/uploads/2021/09/BSB461_DACIAT_-_Consolidated-Report-on-Aquaculture-in-all-Partner-Regions_EN.pdf.
  22. Khrypiuk, V. (2018). The food industry of Ukraine: retrospective analysis and modern problems of development . Ekonomika APK, 25(9), 77-85.
  23. Metlytska, O.I., Melnychuk, S.D., & Spiridonov, V.G. (2017). Insects – a source of nutrients and biologically active substances. Bulletin of Agrarian Science, 6, 29-35. doi: 10.31073/agrovisnyk201706.
  24. Monitoring and ecological assessment of water resources of Ukraine. (n.d.). Retrieved from http://monitoring.davr.gov.ua/ViewReports/List.   
  25. Sakharnatsky, V.V. (2024). Multi-vector nature of ecological and economic assessment of water resources of Ukraine. Agroecological Journal, 1, 165-176. doi: 10.33730/2077-4893.1.2024.299953.
  26. Samarathunga, J., Wijesekara, I., & Jayasinghe, M. (2023). Seaweed proteins as a novel protein alternative: Types, extractions, and functional food applications. Food Reviews International, 39(7), 4236-4261. doi: 10.1080/87559129.2021.2023564.
  27. Sharma, S., Hansen, L.D., Hansen, J.Ø., Mydland, L.T., Horn, S.J., Øverland, M., & Vuoristo, K.S. (2018). Microbial protein produced from brown seaweed and spruce wood as a feed ingredient. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 66(31), 8328-8335. doi: 10.1021/acs.jafc.8b01835
  28. Shiau, S.Y., & Yu, Y.P. (1999). Dietary supplementation of chitin and chitosan depresses growth in tilapia, Oreochromis niloticus×O. aureus. Aquaculture, 179(1-4), 439-446. doi: 10.1016/S0044-8486(99)00177-5.
  29. Souza, M.L.R., Macedo-Viegas, E.M., Sampaio Zuanon, J.A., & Carvalho, M.R.B., & Reis Goes, E.S. (2015). Processing yield and chemical composition of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) with regard to body weight. Acta Scientiarum. Animal Sciences, 37(2), 103-108. doi: 10.4025/actascianimsci.v37i2.24165.
  30. Aquaculture feed and fertilizer resources information system. Rainbow trout – Growth. (2024) Retrieved from https://www.fao.org/fishery/affris/profil-des-especes/rainbow-trout/croissance/fr/.
  31. Utku, D., Çenesiz, S., & Şahin, B. (2023). Blood sampling techniques and preparing for analysis in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Black Sea Journal of Agriculture, 6(1), 68-73. doi: 10.47115/bsagriculture.1185283.
  32. Velasquez, L., Ibañez, I., Herrera, C., & Oyarzun, M. (1991). A note on the nutritional evaluation of worm meal (Eisenia fetida) in diets for rainbow trout. Animal Production, 53(1), 119-122. doi: 10.1017/S000335610000605X.
  33. Yevtushenko M.Yu., Dudnyk S.V., Rudyk-Leuska N.Ya., & Khizhnyak M.I. (2022). Physiology and biochemistry of hydrobionts. Part 1: textbook. Kyiv: FOP Yamchynskyi O.V.
  34. Yevtushenko, M.Yu., & Khyzhniak, M.I. (2019). Methodology of scientific research in fish farming. Kyiv: Center for Educational Literature.
  35. Zaloilo, I.A., Zaloilo, O.V., Rud, Yu.P., & Hrytsyniak, I.I., & Zaloilo, Ye.I. (2021). Application of probiotics in aquaculture (review). Fisheries Science of Ukraine, 2(56), 59-81. doi: 10.15407/fsu2021.02.059.
  36. Kassenbayev, G., Kerimova, U., Rakhimzhanova, G., & Shalgimbayeva, K. (2024). Animal husbandry market in Kazakhstan: Dynamics and prognosis. Scientific Horizons, 27(4), 176-188. doi: 10.48077/scihor4.2024.176.